68 Arbeiten
Diese Studie nutzt einen gentechnisch veränderten *Escherichia coli*-Biosensor, um erstmals die räumlich variable Verfügbarkeit von Sialinsäure im entzündeten Mäusedarm direkt vor Ort zu messen und dabei regionale Diskrepanzen zwischen Entzündungsspitzen und metabolischer Verfügbarkeit sowie den therapeutischen Nutzen einer Sialidase-Hemmung aufzuzeigen.
Die Studie stellt ein neuartiges, streng regulierbares Cre-lox-Rekombinationssystem in *Escherichia coli* vor, das durch seine einstellbare, niedrige Rekombinationsrate die Entwicklung robuster Ganzzell-Biosensoren für die Erfassung von Arsenit unter anoxischen Bedingungen ermöglicht und so eine stabile genetische Speicherung von Umweltexpositionen für Anwendungen in der Umweltüberwachung und synthetischen Biologie schafft.
Diese Studie stellt ein hochmutagenes, orthogonales Replikationssystem vor, das die kontinuierliche Evolution von Genen bis an die biologische Geschwindigkeitsgrenze ermöglicht, indem es in *E. coli* und *Vibrio natriegens* eine extrem hohe Mutationsrate mit der schnellen Zellteilung kombiniert, um neue Funktionen in nur 16 Stunden zu entwickeln.
Die Studie stellt CyanOperon vor, eine Erweiterung des CyanoGate MoClo-Toolkits, die die modulare Assemblierung synthetischer Operons mit bis zu sechs Genen für die Expression in *E. coli* und *Synechocystis* sp. PCC 6803 ermöglicht und dabei sowohl chromosomale Integration als auch Selbstreplikation unterstützt.
Die Studie entwickelt programmierbare, phasenseparierte RNA-Protein-Sialogranula, die als hochaffine Glyko-Nanopartikel sowohl spezifisch Sialinsäure-Lektine erkennen als auch den Eintritt des Influenzavirus in Zellen um etwa 50 % hemmen.
Die Studie stellt ein optimiertes zellfreies Genexpressionssystem vor, das durch eine Kombination aus erhöhter T7-RNA-Polymerase-Aktivität und reduzierter Ribosomenkonzentration die Proteinproduktion aus einer einzigen DNA-Kopie in Mikrotröpfchen um das Zehnfache steigert und so robuste Signalablesungen ermöglicht.
Die Studie stellt GRIPs (GRoup-transfer chimeras for Inducing Proximity) als skalierbare und vielseitige Plattform vor, die mithilfe von abundanten Inhibitoren und modifizierbaren Gruppen-Transfer-Handles eine effiziente Nachbarschaftsinduktion zur gezielten Editierung posttranslationaler Modifikationen ermöglicht.
Die Studie stellt CODE-HB vor, eine virusfreie Plattform zur kontinuierlichen gerichteten Evolution in menschlichen B-Zellen, die den somatischen Hypermutationsmechanismus nutzt, um Proteine wie neutralisierende Antikörper gegen Influenza direkt in menschlichen Zellen mit einem breiten Mutationspektrum zu entwickeln.